>
Actualidad>
Ciencia y Tecnología>
MicroARN móviles: la vía “mensajera” que ayuda a los frutales a resistir la sequíamartes, 15 de septiembre 2026
MicroARN móviles: la vía “mensajera” que ayuda a los frutales a resistir la sequía
MicroARN móviles viajan de raíz a hojas, ajustan genes del estrés hídrico y podrían acelerar selección de portainjertos ante más de 10 años de sequía.
Ciencia y Tecnología
Por: Yexika Montilla | 13 de enero 2026 | 17:22
Pie de foto: Investigación del CEAF identifica microARN que coordinan la tolerancia a sequía en frutales. La Dra. Francisca Parada lidera el proyecto ANID R23F002.
En Chile, la sequía crónica presiona a la fruticultura. Un equipo del CEAF, liderado por la Dra. Francisca Parada, estudia microARN móviles que viajan desde la raíz a las hojas y regulan genes de respuesta al estrés hídrico. El objetivo es identificar “mensajes moleculares” útiles en sistemas injertados y acelerar validaciones en plantas modelo, en el marco del proyecto ANID R23F002.
Chile suma más de una década con déficit hídrico, y aunque 2024 mostró episodios de lluvias intensas, la evidencia académica coincide en que no han revertido la crisis estructural. Ese telón de fondo explica la urgencia de entender cómo “avisan” internamente los frutales que falta agua y qué mecanismos activan para sobrevivir sin perder productividad. La hipótesis de trabajo del CEAF es precisa: existen microARN (miARN) que el tejido radicular produce o modula y que se desplazan hacia el follaje para ajustar, en tiempo real, la expresión de genes que gobiernan cierre estomático, arquitectura radicular y rutas antioxidantes. “La idea es identificar pequeñas moléculas que viajan desde la raíz hasta las hojas”, resume la investigadora. Esa señalización —si se confirma y se aprende a aprovechar— permitiría seleccionar portainjertos y combinaciones injerto/variedad mejor adaptadas a temporadas con menos riego disponible.
Cómo “conversan” las plantas: microARN móviles
Los miARN son moléculas de 21–25 nucleótidos que no codifican proteínas y actúan como reguladores maestros de la expresión génica, ajustando finamente qué genes se activan o silencian según el contexto. En estrés hídrico, revisiones recientes los vinculan a procesos clave: señalización hormonal (particularmente ácido abscísico), control de especies reactivas de oxígeno y reconfiguración de raíces y hojas para optimizar el uso del agua. Además de su función local, varias familias muestran movilidad entre órganos, lo que los convierte en mensajeros sistémicos capaces de coordinar respuestas desde la raíz hasta el canopeo. Entender qué miARN se mueven, hacia dónde y con qué dianas moleculares ofrece una vía biotecnológica concreta para elevar la resiliencia sin transgredir la fisiología natural del cultivo. Ese mapa de movilidad y objetivos génicos guía el diseño experimental del equipo en Rengo.
Ensayos en frutales injertados
El proyecto pone foco en frutales de carozo injertados y en cómo el portainjerto modula la respuesta al déficit. En parcelas experimentales se someten combinaciones a riegos restringidos por periodos definidos y se monitorea el estado hídrico con cámaras de presión, potencial hídrico de tallo al mediodía y variables de intercambio gaseoso; las muestras de raíz y hoja se criofijan inmediatamente en nitrógeno líquido para preservar ácidos nucleicos antes de los análisis. La literatura de manejo en almendro —referente útil para protocolos de riego deficitario controlado— sugiere umbrales operacionales (p. ej., −16 bar de potencial hídrico de tallo) que equilibran ahorro de agua y rendimiento, un marco que inspira la fijación de tratamientos y controles. Con esas condiciones, el equipo perfila miARN candidatos y sugiere rutas de tolerancia asociadas al portainjerto, un punto crítico para traducir descubrimientos a viveros y predios comerciales.
Del laboratorio a la validación rápida (tabaco/tomate)
Como los frutales tardan años en expresar plenamente sus rasgos, las funciones candidatas se validan en plantas modelo de ciclo corto —tabaco y tomate— mediante sobreexpresión o silenciamiento dirigido. El flujo incluye extracción de RNA, secuenciación sRNA/HTS y ensayos de expresión de dianas, siempre cuidando la integridad de las moléculas gracias a la criopreservación inmediata y protocolos de biología molecular de alta sensibilidad. La especialización del equipo se reforzó con estadías en la República Checa, en el ecosistema que integran la Palacký University y el Institute of Experimental Botany de la Academia de Ciencias: un polo reconocido por su trabajo en hormonas vegetales y regulación del crecimiento. Esa cooperación técnica permite medir con precisión señales finas y acortar la distancia entre hipótesis y verificación funcional en pocos meses, sin perder pertinencia para frutales.
Resultados esperados y transferencia productiva
Si se confirma la movilidad de miARN clave y su impacto en rasgos como eficiencia de uso de agua o control estomático, los primeros beneficiarios serán los programas de selección de portainjertos y las decisiones de injertación en viveros. La evidencia comparada en Prunus muestra que el portainjerto puede modular de forma amplia la fisiología del injerto, pero la tolerancia no es universal: una variedad sensible puede “anular” parte de las ventajas del pie si la combinación no es compatible o si el contexto edafoclimático es adverso. Por eso, el vector de transferencia no es “un portainjerto milagroso”, sino paquetes de decisión por especie, combinación y etapa fenológica, con métricas hidrofisiológicas y marcadores moleculares que respalden recomendaciones. En la práctica, esto se traduce en reducir riesgos de temporada seca sin penalizar calibre ni sólidos solubles, y en rutas de manejo más finas.
Próximos pasos (clonado y pruebas de tolerancia)
El tramo final es clonar los miARN más prometedores e introducirlos en plantas modelo para pruebas directas de función: validar si su sobreexpresión o silenciamiento mejora la tolerancia sin castigar rendimiento, y si el fenotipo se replica en combinaciones injertadas bajo riego limitado. Con los candidatos priorizados, el equipo planea definir ventanas fenológicas en las que la señal “vale más”, y establecer umbrales operacionales de campo que dialoguen con métricas moleculares —por ejemplo, niveles de transcritos diana— para protocolos de riego deficitario controlado. Luego, la transferencia se piloteará con productores y viveristas mediante ensayos participativos. “La señal correcta, en el momento justo, puede ahorrar agua y proteger la fruta”, sintetiza Parada, subrayando que Chile tiene capacidades de biología molecular de estándar internacional, pero debe sostener inversión para escalar impactos.
Fuente: ANID, CR2, MDPI, UC ANR, Institute of Experimental Botany, SciELO, CEAF
Suscribete
Twitter
Facebook
Instagram
Linkedin
Enviar